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采用大肠杆菌来源的外膜囊泡作为抗原递送平台可引发针对鲍曼不动杆菌感染的保护性免疫。
Scientific Reports ( IF 3.8 ) Pub Date : 2016-11-16 , DOI: 10.1038/srep37242
Weiwei Huang , Shijie Wang , Yufeng Yao , Ye Xia , Xu Yang , Kui Li , Pengyan Sun , Cunbao Liu , Wenjia Sun , Hongmei Bai , Xiaojie Chu , Yang Li , Yanbing Ma

在人类诊所和动物模型中,已证明外膜囊泡(OMV)具有高度的免疫原性,并诱导了针对细菌感染的免疫反应。我们试图调查工程化的OMV是否可以是有效诱导特异性抗体反应的可行的抗原传递平台。在这项研究中,使用重组基因技术将Omp22(鲍曼不动杆菌的外膜蛋白)展示在大肠杆菌DH5α衍生的OMV(Omp22-OMV)上。Omp22-OMV的形态特征与野生型OMV(wtOMV)相似。用Omp22-OMV免疫可诱导高滴度的Omp22特异性抗体。在鼠类败血症模型中,Omp22-OMV免疫显着保护了小鼠免受临床分离的鲍曼不动杆菌的致死性攻击,这可以通过提高小鼠的存活率来证明,减少了肺,脾,肝,肾和血液中的细菌负担,并抑制了炎症细胞因子的血清水平。体外调理吞噬作用试验表明,从经Omp22-OMV免疫的小鼠中收集的抗血清对临床分离株具有杀菌活性,该分离株部分是特异性抗体依赖性的。这些结果强烈表明,工程化的OMV可以在表面显示完整的异源蛋白(〜22 kDa),并有效诱导特异性抗体反应,因此OMV有望成为可行的疫苗平台。这是部分特异性抗体依赖性的。这些结果强烈表明,工程化的OMV可以在表面显示完整的异源蛋白(〜22 kDa),并有效诱导特异性抗体反应,因此OMV有望成为可行的疫苗平台。这是部分特异性抗体依赖性的。这些结果强烈表明,工程化的OMV可以在表面显示完整的异源蛋白(〜22 kDa),并有效诱导特异性抗体反应,因此OMV有望成为可行的疫苗平台。



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更新日期:2016-11-18
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