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HIV-1 usurps mixed-charge domain-dependent CPSF6 phase separation for higher-order capsid binding, nuclear entry and viral DNA integration
Nucleic Acids Research ( IF 16.6 ) Pub Date : 2024-09-11 , DOI: 10.1093/nar/gkae769 Sooin Jang 1, 2 , Gregory J Bedwell 1, 2 , Satya P Singh 3 , Hyun Jae Yu 4 , Bjarki Arnarson 1 , Parmit K Singh 1, 2 , Rajalingam Radhakrishnan 1 , AidanDarian W Douglas 3 , Zachary M Ingram 5 , Christian Freniere 6 , Onno Akkermans 7 , Stefan G Sarafianos 8 , Zandrea Ambrose 5 , Yong Xiong 6 , Praju V Anekal 9 , Paula Montero Llopis 9 , Vineet N KewalRamani 4 , Ashwanth C Francis 3 , Alan N Engelman 1, 2
Nucleic Acids Research ( IF 16.6 ) Pub Date : 2024-09-11 , DOI: 10.1093/nar/gkae769 Sooin Jang 1, 2 , Gregory J Bedwell 1, 2 , Satya P Singh 3 , Hyun Jae Yu 4 , Bjarki Arnarson 1 , Parmit K Singh 1, 2 , Rajalingam Radhakrishnan 1 , AidanDarian W Douglas 3 , Zachary M Ingram 5 , Christian Freniere 6 , Onno Akkermans 7 , Stefan G Sarafianos 8 , Zandrea Ambrose 5 , Yong Xiong 6 , Praju V Anekal 9 , Paula Montero Llopis 9 , Vineet N KewalRamani 4 , Ashwanth C Francis 3 , Alan N Engelman 1, 2
Affiliation
HIV-1 integration favors nuclear speckle (NS)-proximal chromatin and viral infection induces the formation of capsid-dependent CPSF6 condensates that colocalize with nuclear speckles (NSs). Although CPSF6 displays liquid-liquid phase separation (LLPS) activity in vitro, the contributions of its different intrinsically disordered regions, which includes a central prion-like domain (PrLD) with capsid binding FG motif and C-terminal mixed-charge domain (MCD), to LLPS activity and to HIV-1 infection remain unclear. Herein, we determined that the PrLD and MCD both contribute to CPSF6 LLPS activity in vitro. Akin to FG mutant CPSF6, infection of cells expressing MCD-deleted CPSF6 uncharacteristically arrested at the nuclear rim. While heterologous MCDs effectively substituted for CPSF6 MCD function during HIV-1 infection, Arg-Ser domains from related SR proteins were largely ineffective. While MCD-deleted and wildtype CPSF6 proteins displayed similar capsid binding affinities, the MCD imparted LLPS-dependent higher-order binding and co-aggregation with capsids in vitro and in cellulo. NS depletion reduced CPSF6 puncta formation without significantly affecting integration into NS-proximal chromatin, and appending the MCD onto a heterologous capsid binding protein partially restored virus nuclear penetration and integration targeting in CPSF6 knockout cells. We conclude that MCD-dependent CPSF6 condensation with capsids underlies post-nuclear incursion for viral DNA integration and HIV-1 pathogenesis.
中文翻译:
HIV-1 篡夺了混合电荷结构域依赖性 CPSF6 相分离,用于高阶衣壳结合、细胞核进入和病毒 DNA 整合
HIV-1 整合有利于核斑点 (NS) 近端染色质,病毒感染诱导形成衣壳依赖性 CPSF6 凝聚物,这些凝聚物与核斑点 (NS) 共定位。尽管 CPSF6 在体外显示液-液相分离 (LLPS) 活性,但其不同的固有无序区域,包括具有衣壳结合 FG 基序的中央朊病毒样结构域 (PrLD) 和 C 末端混合电荷结构域 (MCD),对 LLPS 活性和 HIV-1 感染的贡献仍不清楚。在此,我们确定 PrLD 和 MCD 都有助于体外 CPSF6 LLPS 活性。类似于 FG 突变体 CPSF6,表达 MCD 缺失的 CPSF6 的细胞感染一反常态地停滞在核边缘。虽然异源 MCD 在 HIV-1 感染期间有效替代了 CPSF6 MCD 功能,但来自相关 SR 蛋白的 Arg-Ser 结构域在很大程度上是无效的。虽然 MCD 缺失和野生型 CPSF6 蛋白表现出相似的衣壳结合亲和力,但 MCD 在体外和纤维素中赋予 LLPS 依赖性高阶结合和与衣壳共聚集。NS 耗竭减少了 CPSF6 点状物的形成,但未显著影响整合到 NS 近端染色质中,并将 MCD 附着在异源衣壳结合蛋白上,部分恢复了靶向 CPSF6 敲除细胞的病毒核渗透和整合。我们得出结论,MCD 依赖性 CPSF6 与衣壳的缩合是病毒 DNA 整合和 HIV-1 发病机制核侵袭后的基础。
更新日期:2024-09-11
中文翻译:
HIV-1 篡夺了混合电荷结构域依赖性 CPSF6 相分离,用于高阶衣壳结合、细胞核进入和病毒 DNA 整合
HIV-1 整合有利于核斑点 (NS) 近端染色质,病毒感染诱导形成衣壳依赖性 CPSF6 凝聚物,这些凝聚物与核斑点 (NS) 共定位。尽管 CPSF6 在体外显示液-液相分离 (LLPS) 活性,但其不同的固有无序区域,包括具有衣壳结合 FG 基序的中央朊病毒样结构域 (PrLD) 和 C 末端混合电荷结构域 (MCD),对 LLPS 活性和 HIV-1 感染的贡献仍不清楚。在此,我们确定 PrLD 和 MCD 都有助于体外 CPSF6 LLPS 活性。类似于 FG 突变体 CPSF6,表达 MCD 缺失的 CPSF6 的细胞感染一反常态地停滞在核边缘。虽然异源 MCD 在 HIV-1 感染期间有效替代了 CPSF6 MCD 功能,但来自相关 SR 蛋白的 Arg-Ser 结构域在很大程度上是无效的。虽然 MCD 缺失和野生型 CPSF6 蛋白表现出相似的衣壳结合亲和力,但 MCD 在体外和纤维素中赋予 LLPS 依赖性高阶结合和与衣壳共聚集。NS 耗竭减少了 CPSF6 点状物的形成,但未显著影响整合到 NS 近端染色质中,并将 MCD 附着在异源衣壳结合蛋白上,部分恢复了靶向 CPSF6 敲除细胞的病毒核渗透和整合。我们得出结论,MCD 依赖性 CPSF6 与衣壳的缩合是病毒 DNA 整合和 HIV-1 发病机制核侵袭后的基础。