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Nat Cell Biol | FAT1基因突变在非小细胞肺癌中的双重作用

格格 BioArt 2025年01月13日 00:43
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撰文 | 格格

染色体不稳定性CIN是癌症进化过程中普遍存在的现象,尤其是在非小细胞肺癌NSCLC【1-2】。CIN导致异质性增加,从而促进肿瘤的适应性和预后不良。全基因组加倍WGD是CIN的一个重要形式,它通过复制整个基因组来减轻CIN引起的等位基因不平衡,但同时也加剧了CIN【3-4】。WGD与预后不良和治疗耐药性相关【5】。尽管CIN和WGD在促进肿瘤异质性方面起着关键作用,但导致NSCLC中CIN和WGD的遗传事件尚未得到系统研究。

近日,来自英国弗朗西斯·克里克研究所的Charles Swanton研究团队、CRUK肺癌研究中心的Nnennaya Kanu研究团队以及丹麦癌症社会研究中心的Jiri Bartek 研究团队合作在Nature Cell Biology杂志发表题为TRACERx analysis identifies a role for FAT1 in regulating chromosomal instability and whole-genome doubling via Hippo signalling的研究论文,该研究利用TRACERx数据库,使用全外显子组测序(WES)来识别和跟踪遗传变异及其与WGD和CIN的关系。

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研究首先分析了来自TRACERx研究项目中100名NSCLC患者的肿瘤多区域全外显子组测序数据,以识别与WGD和CIN相关的遗传事件。他们发现91个基因中存在795个驱动事件,其中37个与CIN相关。通过多参数RNA干扰(RNAi)筛选,他们确定了6个与DNA损伤应答(DDR)和染色体稳定性相关的肿瘤抑制基因:BAP1、CREBBP、FAT1、NCOA6、RAD21和UBR5。其中,FAT1突变在TRACERx 421研究队列中很常见(约10%),并且有相当一部分突变发生在WGD发生之前。此外,FAT1突变在肺鳞状细胞癌(LUSC)中比肺腺癌(LUAD)中更常见,并且在LUSC肿瘤中发生之前就受到正向选择。

研究人员使用细胞系模型进一步研究了FAT1突变导致WGD和CIN的分子机制。他们发现 FAT1缺失不影响早期DDR(如磷酸化ATM、γH2A.X 和 53BP1多聚化)的IRIF形成,但会显著抑制CtIP的IRIF形成,CtIP负责启动ssDNA剪切。FAT1缺失还降低了BRCA1的IRIF形成,BRCA1是G2/M细胞中关键的同源修复因子。FAT1敲除导致RAD51 IRIF形成受损,但γH2A.X无明显变化。FAT1缺失还导致持续DNA损伤,表现为53BP1核体形成频率增加。FAT1缺失还降低了A549细胞对PARP抑制剂、顺铂和羟基脲等诱变性应激的敏感性。此外,FAT1缺失与同源修复缺陷相关的基因组特征相关,包括端粒等位基因失衡(TAI)、大规模转换(LST)和杂合子丢失(LOH)。FAT1缺失降低了替代末端连接效率,而没有显著降低远端末端连接。这些结果表明FAT1缺失会削弱同源修复。

研究人员发现FAT1缺失导致微核形成增加,这表明复制压力没有得到解决。FAT1缺失还导致有丝分裂错误率升高,包括染色质桥和滞后染色体的形成。此外,FAT1缺失导致染色体易位事件增加,以及结构染色体异常,包括辐射状染色体和染色单体间隙。这些结果表明 FAT1缺失会导致结构CIN。不仅如此,FAT1 缺失导致有丝分裂缺陷,包括多核形成和核形态改变。此外,FAT1 缺失导致PC9肺癌细胞系出现数值CIN,表现为细胞周期中期染色体数量异常。FAT1 缺失还导致细胞质核增多和核形态改变,这表明FAT1缺失会导致WGD。

最后,研究人员证明FAT1缺失导致Hippo信号通路关键激活因子YAP/TAZ的核定位增加。FAT1缺失还增加了TEAD转录活性,TEAD是Hippo信号通路的最终输出。FAT1缺失也增加了YAP1的核定位,但YAP1的磷酸化水平没有发生显著变化。FAT1缺失还通过降低 LATS1/2的表达来调节TEAD活性,LATS1/2是YAP1核定位的关键负调节因子。LATS1/2缺失导致DNA末端剪切率降低、53BP1核体形成增加和多核形成增加,这与FAT1缺失的表型相似。这些结果表明FAT1缺失会导致Hippo信号通路失调。

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图1 DDR和CIN筛选的设计原理图

总之,该研究发现了FAT1基因突变在非小细胞肺癌 (NSCLC) 中起着关键作用,它通过影响同源重组修复效率,进而导致染色体不稳定性和全基因组加倍。这揭示了FAT1在肺癌进化中的重要性,并为开发新的治疗策略提供了潜在靶点。

原文链接:
https://doi.org/10.1038/s41556-024-01558-w

制版人:十一



参考文献


1. Steele, C. D. et al. Signatures of copy number alterations in human cancer. Nature 606, 984-991 (2022).

2. Drews, R. M. et al. A pan-cancer compendium of chromosomal instability. Nature 606, 976–983 (2022).

3. Gemble, S. et al. Genetic instability from a single S phase after whole-genome duplication. Nature 604, 146–151 (2022).

4. Dewhurst, S. M. et al. Tolerance of whole-genome doubling propagates chromosomal instability and accelerates cancer genome evolution. Cancer Discov. 4, 175–185 (2014).

5. Lopez, S. et al. Interplay between whole-genome doubling and the accumulation of deleterious alterations in cancer evolution. Nat. Genet. 52, 283–293 (2020).


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